Đánh giá của các loài vi tảo khác nhau và Artemia (Artemia franciscana) 

có thể vectơ của vi khuẩn hoại tử hepatopancreatitis 

Luz Angélica Avila-Villa 

, Marcel Martínez-Porchas 

một 

, Teresa Gollas-Galvan a, 

⁎, José A. López-Elías 

, 

Lauro Mercado b 

, Álvaro Murguia-López b 

, Fernando Mendoza-Cano c 

, Jorge Hernandez-Lopez c 

một 

Centro de Investigación en Alimentación y Desarrollo, AC Km. 0,6 đường La Victoria, Hermosillo, Sonora, Mexico 

Departamento de Investigaciones Científicas y Tecnológicas de la Universidad de Sonora. Luis Donaldo Colosio, S / N. Colonia Centro, Hermosillo, Sonora, Mexico 

c 

Centro de Investigaciones Biológicas del Noroeste, Avenida Centenario # 53, Hermosillo, Sonora, 83000, Mexico 

Thông tin tóm tắt bài viết 

Điều lịch sử: 

Tháng Tư 20, 2011 

Nhận được trong hình thức sửa đổi ngày 20 tháng 5 2011 

Chấp nhận ngày 26 tháng 5 năm 2011 

Có sẵn trực tuyến ngày 17 tháng 6 năm 2011 

Từ khóa: 

Artemia 

NHPB 

Tác nhân gây bệnh 

Tôm 

Vi tảo 

Các loài vi tảo thường được sử dụng trong tôm nuôi trồng thủy sản và quan sát thấy trong môi trường sống của tôm (Chaetoceros 

muelleri, Dunaliella sp. và Navicula sp), và Artemia (Artemia franciscana) được đánh giá như là các vectơ có thể 

hoại tử hepatopancreatitis vi khuẩn (NHPB). Các loài vi tảo và Artemia đã được tiếp xúc để NHPB. 

Tám ngày sau khi tiêm chủng, NHPB đã được phát hiện (PCR) chỉ trong Navicula sp. Sau đó, ba 

vi tảo tiêm phòng đã được sử dụng để thức ăn màu trắng (Litopenaeus vannamei) tôm: tôm ăn C. muelleri 

Dunaliella sp. kết quả tiêu cực để NHPB sau 12 ngày, trong khi 20% tôm ăn Navicula sp.đã đến 

NHPB tích cực. Về Artemia, NHPB được phát hiện trong các sinh vật (đã chết hoặc còn sống), bốn và tám 

ngày bài tiêm chủng. Điều khiển vi tảo và Artemia vẫn còn tiêu cực cho NHPB trong các thử nghiệm 

thời gian. Kết quả cho thấy vi tảo phù du (C. muelleri và Dunaliella sp.) Không có thể là vectơ 

NHPB, trong khi có khả năng vi tảo đáy (Navicula sp.) Và Artemia sp. có thể hành động như vectơ 

vi khuẩn. 

© 2011 Elsevier B. V. Tất cả các quyền. 

1. Giới thiệu 

Các vi khuẩn hepatopancreatitis hoại tử (NHPB) là một nội bào 

Đa hình vi khuẩn Gram âm có ảnh hưởng đến tôm penaeid 

(Frelier et al, 1992; Lightner và Redman năm 1992; Lightner và Redman, 

1994). Vào đầu năm 1990, các nghiên cứu kính hiển vi cho thấy sự hiện diện của 

differentmorphotypes của NHPB, địa phương trong tế bào chất 

và hepatopancreatic biểu mô ống của tôm. Mặc dù hình thái- 

một cách hợp lý, họ aremarkedly khác biệt, họ đại diện cho các giai đoạn sống khác nhau

của một sinh vật phức tạp (Frelier et al, 1992, Lightner và Redman, 

1992). Vi khuẩn này là một thành viên của lớp con α-Proteobacteria 

và nó được coi là tác nhân gây bệnh cho tôm, ví dụ, các thí nghiệm 

nơi tôm đã được infectedwith NHPB báo cáo rằng không có 

sinh vật phục hồi từ bệnh (Loy và Frelier năm 1996; Vincent 

Lotz, 2005). Đặc biệt, NHPB có thể gây ra gần 95% các khoản lỗ trong 

sản xuất của trang trại (Frelier et al, 1992.), trong yearsmass gần đây chết 

off đã giảm do thực hiện các giao thức vệ sinh và 

việc sử dụng thuốc kháng sinh. Tuy nhiên, NHPB vẫn được coi là một chính 

vấn đề cho ngành công nghiệp nuôi tôm ở các nước Mỹ. 

Sự lây lan của NHPB đối với các trang trại từ các nước khác đe dọa 

sự phát triển của tôm nuôi trồng thủy sản trên toàn thế giới. Đặc biệt, 

epizooties nặng Litopenaeus nuôi tôm thẻ chân trắng xảy ra ở 

Mexico (Sonora và Sinaloa) trong những năm qua và tử vong 

do NHPB nhiễm (Ibarra-Gamez et al., 2007). Mặc dù 

thông tin đó, liên quan đến chu kỳ cuộc sống và động lực lây lan của 

NHPB là khan hiếm. Ví dụ, các vector của NHPB vẫn còn chưa biết; 

ngoài ra, NHPB có được thành công truyền và văn hóa 

chỉ trong gan tụy tôm, đó là lý do giải thích như vậy 

thiếu thông tin về vi khuẩn. 

Tôm nuôi trồng thủy sản thường xuyên thực hiện ở quy mô bán thâm canh, 

có nghĩa là tôm nuôi thường cho ăn trên sự kết hợp của 

công thức thức ăn chăn nuôi và thức ăn tự nhiên, chẳng hạn như sinh vật phù du và 

động vật phù du (Martínez-Cordova et al., 2009). Ví dụ, khác nhau 

giáp xác loài vi tảo và vi sinh thường được trình bày 

trong hệ thống nuôi tôm. Ngoài ra, các loài vi tảo 

Chaetoceros muelleri, Dunaliella sp. và Navicula sp, và branchiopod 

các loài giáp xác như Artemia sp. hầu như được sử dụng như 

nguồn thức ăn trong quá trình larviculture tôm, nuôi thịt và nuôi thịt 

giai đoạn (Becerra-Dorame et al, 2010; Campana-Torres et al, 2010. 

Lopez-Elías et al, 2005; Pereira-Melo et al, 2010). 

Sự hiện diện của thực vật phù du và động vật phù du và ảnh hưởng của họ như là 

vector bệnh trong hệ sinh thái thủy sinh đã được công nhận 

(Drake và cộng sự, 2005; Sahul Hameed và Balasubramanian, 2000). Trong 

để hiểu được động lực lây lan của vi khuẩn và thực hiện 

giao thức an toàn, nó sẽ trở thành quan trọng để đánh giá thực vật phù du 

và các sinh vật động vật phù du liên kết với văn hóa và vòng đời của 

tôm, khi các hãng có thể có của NHPB. 

Nuôi trồng thủy sản 318 (2011) 273-276 

⁎ tác giả tương ứng. Tel: 52 662 2892400. 

Địa chỉ E-mail: [email protected] (T. Gollas-Galvan). 

0044-8486 / $ - vấn đề trước © 2011 Elsevier BV. Tất cả các quyền. 

doi: 10.1016/j.aquaculture.2011.05.043 

Nội dung danh sách có sẵn tại ScienceDirect 

Nuôi trồng thủy sản 

trang web của tạp chí: www.elsevier.com / xác định vị trí / thủy onlineThe Mục đích của nghiên cứu này là để đánh giá các loài vi tảo khác nhau 

(C. muelleri, Dunaliella sp và Navicula sp.) Và Artemia (Artemia 

franciscana) như là vectơ có thể có của NHBP. 

2. Vật liệu và phương pháp 

Các sinh vật đánh giá là có thể các tàu sân bay NHPB ba 

loài vi tảo, tảo cát (Chaetoceros muelleri), một cloroficeae 

(Dunaliella sp.), (Navicula sp.) Sinh vật đáy vi tảo và 

branchiopod giáp xác, A. franciscana. 

2.1. Vi tảo thử nghiệm 

2.1.1. Vi tảo văn hóa 

Các loài vi tảo được thu được từ nền văn hóa vi tảo 

phòng thí nghiệm tại Đại học de Sonora. Họ được chia tỷ lệ từ 2 mL 

ống đến 2 bình Erlenmeyer L, bằng cách sử dụng f / 2 trung bình (1 mL · L-1 

) Như 

chất dinh dưỡng nguồn. Điều kiện của nền văn hóa vi tảo là: liên tục 

nhiệt độ (25 ° C), thông khí và chiếu sáng (115 mmol · m-2 

-1 

). 

Sáu bình mỗi loài vi tảo được giữ vững. 

2.1.2. Giải trình vi tảo để NHPB 

Cấy cho vi tảo bao gồm trên gan tụy tôm 

nhiễm NHPB (HPNHPB), được tẩm ướt, đồng nhất 

(Ultra-Turrax đồng hóa, IKA Works Inc, Mỹ) và hòa tan trong 

nước biển được lọc bởi 0,45 mM (1:1, w / v), sau đó, cấy được 

lọc thông qua một màn hình (mắt lưới 0,3 mm). Cuối cùng, inoculums 

thêm vào mỗi bình với tốc độ 0,5 ml · L-1 

và hỗn hợp. 

Trước khi tiêm chủng (kiểm soát) và tám Đăng ngày tiêm chủng, 

Các mẫu vi tảo được thu thập từ bình mỗi. Để thu thập vi- 

tảo mẫu, bình được trộn đều và khối lượng là 100 mL 

đã được trích xuất. Các mẫu này sau đó được lọc qua GF / C ông ta là ai 

bộ lọc để có vi tảo tập trung. Các vi tảo 

tập trung đã được rửa sạch bằng 50ml dung dịch natri thiosulfat (0,3%) 

và hai lần với 50ml nước biển vô trùng. Cả hai, lọc nước 

và vi tảo tập trung được lưu trữ tại -20 ° C cho thêm PCR 

phân tích. 

2.1.3. Tôm tiêm chủng 

Để xác minh, nếu NHPB vẫn còn khả thi trong bình vi tảo, 

mẫu bổ sung (100 ml) được trích xuất. Các vi tảo 

tập trung fromeach flaskwere gộp lại và resuspended trong 3 mL 

nước biển vô trùng, hệ thống treo của C. muelleri, Dunaliella sp. và 

Navicula sp. được sử dụng để cấy người lớn tôm thẻ chân trắng (L. vannamei, 

~ 15-17 g). Hai mươi tôm được tiêm cho mỗi loài vi tảo 

và 100 ml đình chỉ vi tảo đã được cung cấp bởi bức 

(Gracia-Valenzuela et al, 2011). Mười hai ngày sau tiêm chủng, tôm 

đã hy sinh và mổ xẻ để trích xuất HP và lưu trữ chúng AT-20 ° C. 

Ba nhóm của tôm được cho ăn với vi tảo (C. muelleri, 

Dunaliella sp. và Navicula sp. tương ứng) miễn NHPB. Tôm sử dụng 

thí nghiệm đã được chứng nhận như là miễn phí của NHPB Centro de 

Investigaciones Biológicas del Noroeste. 

2.2. Artemia thử nghiệm 

U nang Artemia decapsulated và tuỳ tiện phân phối vào 

sáu xe tăng thử nghiệm (10 L) ở mật độ của 3 sinh vật · ml-1 

. Các 

Các sinh vật được cho ăn vi tảo Dunaliella sp. trong thời gian đầu tiên 

20 ngày sau đó, đầu vào vi tảo đã được thay thế bằng cách xây dựng 

thức ăn chăn nuôi Camaronina (® Purina, Hermosillo, Sonora, Mexico) tại một tỷ lệ 5 - 

6% của tổng sinh khối - ngày-1 

. Đến ngày thứ 30, Artemia được tiêm 

với NHBP. Cấy bao gồm trên HPNHPB hòa tan trong glycerol 

(1:1, w / v), các giải pháp của HPNHPB + glycerol được kết hợp với 

nghiền thành bột thức ăn chăn nuôi xây dựng, với tỷ lệ 1:1 (v / w). Sau đó, 

inoculums (1 mL HPNHPB + glycerol + công thức thức ăn chăn nuôi) được resus 

pended trong 10 ml dung dịch nước biển vô trùng và thêm vào ba kinh nghiệm 

xe tăng tinh thần, trong khi ba xe tăng khác nhận được 

inoculums nhưng mà không NHPB (1 mL HP + glycerol + công thức thức ăn chăn nuôi). 

Artemia đã được lấy mẫu tại ngày thứ 4 và thứ 8 của cuộc thử nghiệm và lưu trữ 

-20 ° C. Mẫu được phân tích tại năm địa điểm khác nhau từ 

mỗi bể, mỗi mẫu phụ bao gồm 10 sinh vật, tức là 50 

Artemias · bể-1 

. Lấy mẫu Artemia được đặt trên màn hình 

(0,5 mm lưới) và triệt để rửa sạch tám lần với vô trùng 

marinewater và hai otherwith vô trùng distilledwater; Artemiawere 

quan sát thông qua một kính hiển vi (10 × × 40) để xác minh sự vắng mặt 

các chất hữu cơ gắn liền với cơ thể của họ. Ngoài ra, chết 

Các sinh vật và các mẫu nước cũng được thu thập. 

2.3. NHPB phát hiện 

Sự hiện diện của NHPB đã được khẳng định trong nước, tôm, vi tảo 

và Artemia bằng các công cụ phân tử. 

2.3.1. PCR kiểm tra 

DNA được chiết xuất từ ​​nước, vi tảo, tôm HP và 

Artemia bởi một bộ SPIN GENECLEAN (Qbiogene ®). Đặc biệt, các mẫu 

HP và Artemia được triệt để nghiền và đồng nhất bởi một 

mô đồng hóa Ultra-Turrax T23 (IKA Works Inc, Mỹ) trước khi 

bắt đầu các thủ tục khai thác DNA. 

Cụ thể primerswere thiết kế xem xét GenBank chuỗi 

U65509: NHP/F2: 5'-CGT TGG AGG TTC GTC CTT CAG T-3 ', NHP/R2: 5'- 

GCC ATG AGG ACC TGA CAT CAT C-3. Một kitwas PCR được sử dụng để phân tích 

mẫu (Promega, USA Corp.) theo các điều kiện sau đây: 1 chu kỳ 

tại 95 ° C - 5 phút, 35 chu kỳ 94 ° C - 1 phút, 60 ° C - 1 phút, 72 ° C - 1 phút, 

và một chu kỳ cuối cùng tại 72 ° C - 10 phút. 

Các sản phẩm PCR được phân tích bằng điện di sử dụng agarose gel 

(2%; E-Gel, Invitrogen); amplicon đã được quan sát thấy bằng cách sử dụng một tia cực tím 

Transilluminator thích nghi với một hình ảnh chuyên ngành 100 cameraGel-Logic 

Hệ thống (KODAK, Đức) và phân tích bởi các phần mềm Kodak 

Hình ảnh hệ thống 4.0 (KODAK, Đức). Các sản phẩm PCR được 

tinh khiết bằng cách sử dụng một thanh lọc PCR kitQIAquick ® (Qiagen, Mỹ) sau đây 

themanufacturer của chi tiết kỹ thuật, sau đó, sampleswere tinh khiết 

chuẩn bị và gửi đến một phòng thí nghiệm chuyên ngành (Centro de Investigaciones 

Sobre Enfermedades Infecciosas [CISEI]) được giải mã. Nucleotide 

trình tự được so sánh với GenBank U65509 chuỗi trong 

Blast N thuật toán của Trung tâm Quốc gia về Thông tin Công nghệ sinh học 

Bethesda, MD (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/). 

3. Kết quả 

3.1. Vi tảo thử nghiệm 

Vi khuẩn hepatopancreatitis hoại tử không được phát hiện bằng phương pháp PCR 

vi tảo tập trung hoặc lọc nước từ mỗi 

điều trị trước khi tiêm chủng (Hình 1). Sau khi tiêm chủng, NHPB 

được phát hiện trong filtratedwater của mỗi cách điều trị và cũng có trong sinh vật đáy 

vi tảo (Navicula sp.), tuy nhiên các vi khuẩn không được phát hiện trong 

C.muelleri andDunaliella sp. (Hình 1) A 379-bp. Ampliconwas quan sát thấy ở 

Agarose gel khi một mẫu kết quả tích cực (Bảng 1). 

Tôm được cho ăn với C. muelleri và Dunaliella sp. trước đây tiếp xúc 

HPNHPB kết quả tiêu cực đến NHPB lúc 12 ngày sau tiêm chủng; trong 

Ngược lại, 20% tôm ăn Navicula sp. kết quả tích cực để NHPB; 

các vi khuẩn đã được phát hiện trong một tôm chết ở ngày thứ 6 bài 

tiêm chủng, trong khi phần còn lại đã được phát hiện vào ngày thứ 12. Tôm ăn on 

ba của loài vi tảo được coi là miễn phí trên NHPB 

kết quả tiêu cực (Bảng 1). 

3.2. Artemia thử nghiệm 

Những vi khuẩn hepatopancreatitis hoại tử đều không phát hiện 

Artemia trước khi tiêm chủng với HPNHPB. Sau đó, NHPB phát hiện 

kết quả tích cực trong 80% mẫu Artemia tại bài viết ngày thứ 4 

724 L. A. Avila-Villa et al. / Nuôi trồng thủy sản 318 (2011) 273-276inoculation và ngày 8, 100% các mẫu kết quả tích cực 

(Hình 2). Artemia và nước được lấy mẫu từ các thùng kiểm soát vẫn còn 

tiêu cực trong thời gian thí nghiệm (0, 4 và 8 ngày). 

Về chết Artemia, NHPB cũng được phát hiện trong những 

sinh vật. Ngoài ra, sự hiện diện của NHPB được phát hiện trong 

nước từ các bể xử lý (Hình 2, Bảng 1). Sự tồn tại của 

tiêm Artemia là 80% và 70% ở ngày thứ 4 và thứ 8 tương ứng, 

trong khi Artemia từ bể điều khiển đã có một sự tồn tại của 90% và 85% tại 

cùng một ngày. 

Kết quả từ trình tự amplicon tích cực để NHPB 

(379pb) từ cả hai thí nghiệm được so sánh để NHPB 

tài liệu tham khảo chuỗi các GenBank (U65509) và% lần xuất hiện 100. 

4. Thảo luận 

Kết quả tiêu cực cho NHPB được quan sát thấy bằng cách sử dụng vi tảo 

C. muelleri và Dunaliella sp. như vector, các vi khuẩn đã không nhận được 

gắn liền với bất kỳ vi tảo này và rõ ràng, họ không 

sống sót sau bốn ngày trong sự hiện diện của cả hai loài vi tảo. 

Ở đây, cả hai loài vi tảo đã được báo cáo có 

kháng khuẩn hoạt động, sản xuất các chất kháng sinh (Ohta et al. 

Năm 1994; Sánchez-Saavedra et al, 2010), do đó, nó có thể NHPB 

bị ảnh hưởng bởi hoạt động của kháng sinh như vậy. 

Đối với các vi tảo đáy (Navicula sp.), NHPB 

dường như có thể để tồn tại và gắn liền với vi tảo. 

Benthonic vi tảo có thể dễ dàng hình thành màng sinh học, và một số vi khuẩn 

báo cáo phát triển mạnh trong những màng sinh học bằng cách sử dụng các dịch tiết vi tảo 

hoặc bài tiết các sản phẩm ngoại bào (carbohydrated và nitơ 

chất, các axit hữu cơ, chất béo) như là nguồn dinh dưỡng (Caroppo et al, 

Năm 2003; Ledger và Hildrew, 1998). Hơn nữa, nó đã được tài liệu 

mented rằng các vi khuẩn chủ yếu gắn liền với màng sinh học tảo 

γ-proteobacteria và α-proteobacteria (Doverstov, 2010); riêng 

ular, NHPB được coi là α-proteobacteria (Loy và Frelier, 1996). 

Vì vậy, nó có thể là màng sinh học, vi tảo cung cấp đầy đủ 

chất nền cho NHPB. 

Thực tế là chỉ có 20% của tôm ăn với Navicula tiêm 

sp. kết quả tích cực để NHPB, có thể được giải thích bởi sự hình thành của 

uẩn vi tảo đáy, mà có thể cản trở một homoge 

neous phân phối của NHPB, mặt khác, nó có thể được có thể 

rằng chỉ có một tỷ lệ nhỏ của NHPB đã có sẵn tại thời điểm 

tiêm chủng. Về vấn đề này, điều quan trọng là biết được bao lâu NHPB có thể. 

tồn tại gắn liền Navicula sp. 

Về Artemia, nó đã được chứng minh này giáp xác 

có thể hành động như là một vector của NHPB, vi khuẩn được phát hiện càng sớm càng 

bốn ngày sau khi tiêm chủng, trong khi các thí nghiệm khác đã cho thấy 

sự hiện diện của NHPB tôm tại 6-20 ngày sau tiêm chủng 

(Vincent và Lotz, 2005). Ngoài ra, Artemia đã được công nhận 

như là một vector tiềm năng của virus và vi khuẩn mầm bệnh cho tôm (Cano 

et al, 2009; Lone et al, 2009). 

Sự tồn tại của Artemia dường như bị ảnh hưởng bởi các NHPB 

tiêm chủng, tuy nhiên kết quả là không kết luận, bởi vì có 

không có thông tin liên quan đến tác động của vi khuẩn 

tình trạng sinh lý của Artemia, ngoài ra, nó cũng rất quan trọng 

biết bao lâu có thể NHPB tồn tại trong cơ thể Artemia. Tuy nhiên, 

kết quả của thí nghiệm này có liên quan, xem xét rằng có 

không báo cáo về các vector có thể có của NHPB, do đó, kết quả 

có thể được coi như là một phương pháp tiếp cận đầu tiên để hiểu các NHPB 

năng động trong môi trường. 

5. Kết luận 

Từ những kết quả, nó có thể kết luận rằng sinh vật phù du vi tảo 

(C. muelleri và Dunaliella sp.) Không thể là vật truyền bệnh của NHPB, trong khi có 

bằng chứng cho thấy vi tảo đáy, Navicula sp. có thể hoạt động như một 

vector. Ngoài ra, nó đã được chứng minh rằng Artemia có thể hoạt động như một 

tàu sân bay của vi khuẩn, cho thấy rằng các loài giáp xác có thể đóng một 

vai trò như là vector NHPB. 

Tài liệu tham khảo 

Becerra-Dorame, MJ, López-Elías, JA, Enriquez-Ocaña, F., Huerta-Aldaz, N., Voltolina, 

D., Osuna-Lopez, I., Izaguirre-Fierro, G., 2010. Tác động của tế bào ban đầu và chất dinh dưỡng 

tập trung vào sự tăng trưởng và sản xuất sinh khối của các nền văn hóa ngoài trời của 

Dunaliella sp. Annales Botanici Fennici 47, 109-112. 

1234 567 8 9101112 

379bp 

Hình 1. Vi tảo và tôm. Agarose gel điện di phân tích PCR 

chiết xuất DNA frommicroalgae (làn đường 1-6) tiêm và không tiêm phòng (kiểm soát) 

NHPB, từ tôm ăn tiêm phòng và không-tiêm Navicula sp. (Làn xe 7-9). 

NHPB tích cực và tiêu cực điều khiển (làn xe 10 và 12). Marker thấp DNA 

khối thang (Invitrogen) (ngõ 11). 

Bảng 1 

Kết quả PCR của phương pháp điều trị và kiểm soát từ tôm, vi tảo và Artemia 

thí nghiệm. Kiểm soát nhãn, đại diện cho các sinh vật không tiêm phòng 

NHPB, trong trường hợp tôm, nó có nghĩa là họ được cho ăn trên vi tảo miễn NHPB. 

Tiêm nhãn hiệu đại diện cho các tiêm NHPB. 

Kiểm soát xúc để NHPB 

Chaetoceros muelleri 

Dunaliella sp. - 

Navicula sp. - + 

Tôm + C. muelleri - 

Tôm + Dunaliella sp. - 

Tôm + Navicula sp. - + 

Artemia (đã chết và còn sống) - + 

* Symbolmeans tích cực mà một 379 bp ampliconwas quan sát thấy trong các gel điện di.

12 3 4 56 7 8 

Hình 2. Artemia. Agarose gel điện di PCR khuếch đại DNA chiết xuất từ 

Artemia tiêm NHPB, không tiêm phòng (kiểm soát) và nước văn hóa. Tích cực 

và tiêu cực NHPB điều khiển (làn xe 6 và 8). Marker thấp DNAmass thang 

(Invitrogen) (ngõ 7). 

725 L. A. Avila-Villa et al. / Nuôi trồng thủy sản 318 (2011) 273-276Campaña-Torres, A., Martínez-Cordova, LR, Villarreal-Colmenares, H., Cortés-Jacinto, 

E., 2010. Đánh giá của nồng độ khác nhau của người lớn sống Artemia (Artemia 

franciscana 1906) làm thức ăn ngoại sinh tự nhiên về chất lượng nước và sản xuất 

các thông số của Litopenaeus vannamei (Boone 1931) trước khi phát triển mạnh mẽ. 

Nuôi trồng thủy sản 42 nghiên cứu, 40-46. 

Cano, I., Lopez-Jimena, B., García-Rosado, E., Ortiz-Delgado, JB, Alonso, MC, Borrego, JJ, 

Sarasquete, C., Castro, D., 2009. Phát hiện và kiên trì của bệnh Lymphocystis 

virus (LCDV) trong Artemia sp. Nuôi trồng thủy sản 291, 230-236. 

Caroppo, C., Stabili, L., Cavallo, R.A. năm 2003. Tảo cát và vi khuẩn đa dạng: stury của họ 

mối quan hệ trong biển miền Nam Sea.Mediterranean Adriatic 4 Khoa học, 73-82. 

Doverstov, S., 2010. Marine màng sinh học. Chương 9. Trong: Durr, S., Thomason, J.C. (eds.) 

Biofouling. Wiley-Blackwell, Singapore, p. 405. 

Drake, LA, Meyer, AE, Forsberg, RL, Baier, RE, Doblin, MA, Heinemann, S., Johnson, 

W.P., Koch, M., Rublee, P.A., Dobbs, F.C. năm 2005. Cuộc xâm lược tiềm năng của vi sinh vật 

và các tác nhân gây bệnh thông qua ô nhiễm thân nội thất: bioflims bên trong bể chứa nước. Sinh học 

Cuộc xâm lược 7, 969-982. 

Frelier, PF, Sis, RF, Bell, TA, Lewis, DH, 1992.Microscopic và cực kỳ nghiên cứu cấu trúc 

hoại tử hepatopancreatitis trong tôm Thái Bình Dương trắng (Penaeus vannamei) 

nuôi trong Texas. Thú y Bệnh Học 4, 269-277. 

Gracia-Valenzuela, MH, Avila-Villa, LA, Yepiz-Plascencia, G., Hernandez-Lopez, J., 

Mendoza-Cano, F., Garcia-Sanchez, G., Gollas-Galvan, T., 2011. Đánh giá 

khả năng tồn tại của vi khuẩn hepatopancreatitis hoại tử (NHPB) được lưu trữ ở -20 độ 

C để sử dụng trong nhiễm trùng buộc phải ăn Penaeus (Litopenaeus) tôm thẻ chân trắng. 

Nuôi trồng thủy sản 311, 105-109. 

Ibarra-Gamez, JC, Galaviz-Silva, L., Molina-Garza, zJ, 2007. Phân phối của hoại tử 

hepatopancreatitis vi khuẩn (NHPB) ở tôm thẻ chân trắng nuôi, Litopenaeus 

tôm thẻ chân trắng, từ Mexico. Ciencias Bến du thuyền 33, 1-9. 

Ledger, M.E., Hildrew, A.G. năm 1998. Thời gian và không gian biến thể trong các màng sinh học epilithic 

của một dòng axit. Nước ngọt Sinh học 40, 655-670. 

Lightner, D.V., Redman, R.M. năm 1992. Bằng chứng hình thái cho một vi khuẩn đơn 

nguyên nhân trong hepatopancreatitis hoại tử Texas trong Penaeus tôm thẻ chân trắng (giáp xác: 

Decapoda). Bệnh của sinh vật thủy sản 13, 235-239. 

Lightner, D.V., Redman, R.M. năm 1994. Một bịnh dịch thú hepatopancreatitis hoại tử 

nuôi tôm penaeid (giáp xác: Decapoda) ở tây bắc Peru. Nuôi trồng thủy sản 

122, 9-18. 

Lone, H., Bourna, D.G., Hall, M.R., 2009. Nội địa hóa, phong phú và cộng đồng 

cấu trúc của vi khuẩn kết hợp với Artemia: tác động của nauplii làm giàu và 

kháng sinh điều trị. Nuôi trồng thủy sản 293, 278-285. 

Lopez-Elías, JA, Voltolina, D., Enriquez-Ocaña, F. năm 2005. Đại chúng trong nhà và ngoài trời 

sản xuất của tảo cát Chaetoceros muelleri trong một trại giống comercial Mexico. 

Nuôi trồng thủy sản Kỹ thuật 33, 181-191. 

Loy, J.K., Frelier, P.F., năm 1996. Cụ thể, nonradioactive phát hiện vi khuẩn NHP 

Penaeus vannamei lai tại chổ. Tạp chí thú y chẩn đoán 

8 điều tra, 324-331. 

Martínez-Cordova, LR, Martínez-Porchas, M., Cortés-Jacinto, E., 2009. Mexico và 

thế giới tôm nuôi trồng thủy sản hoạt động bền vững, ngành công nghiệp gây ô nhiễm?Revista 

Internacional de Contaminación Ambiental 25, 181-196. 

Ohta, S., Ikegami, N., Shiomi, Y., Aozasa, O., Mase, Y., Miyata, H., 1994. Tăng cường 

sản xuất chống Staphylococcus aureus đề kháng methicillin (MRSA) chất 

biển màu xanh lá cây tảo Dunaliella primolecta theo điều kiện nuôi cấy tối ưu. 

Botanica Marina 37, 561-566. 

Pereira-Melo, MP, Oliveira Carvalheiro, JM, Alves Cordeiro, T., Ribeiro Queiroz, A., 

Prado, J.P., Ferreira Borges, I., 2010. Phytoplanktonic thành phần của ba 

hệ thống canh tác được sử dụng trong biển tôm Litopenaeus vannamei (Boone, 1931) 

trang trại. Acta Sectarium Sinh học 32, 223-228. 

Sánchez-Saavedra, MP, Licea-Navarro, A., Berlández-Sarabia, J., 2010. Đánh giá 

hoạt động kháng khuẩn của các loài khác nhau của thực vật phù du. Revista de Biología 

Marina y Oceanografía 45, 531-536. 

Sahul Hameed, a.s., Balasubramanian, G., 2000. Kháng kháng sinh của vi khuẩn bị cô lập

Artemia và hiệu quả của formaldehyde để kiểm soát tải vi khuẩn. 

Nuôi trồng thủy sản 183, 195-205. 

Vincent, A.G., Lotz, J.M., năm 2005. Thời gian khoá học của hepatopancreatitis hoại tử (NHP) 

thử nghiệm bị nhiễm Litopenaeus tôm thẻ chân trắng và định lượng của NHP-vi khuẩn 

bằng cách sử dụng real-time PCR. Bệnh của sinh vật thủy sản 67, 167-169. 

726 L. A. Avila-Villa et al. / Nuôi trồng thủy sản 318 (2011) 273-276